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免疫熒光(Immunofluorescence):簡稱IF,與western blotting一樣,也是根據抗原抗體反應的原理,將不影響抗原抗體活性的熒光色素標記在抗體或抗原上,與其相應的抗原或抗體結合後,在熒光顯微鏡下進行觀察,從而確定抗原或抗體的性質和定位,包括直接法和間接法。

一、實驗步驟

1. 樣品準備(貼壁細胞、懸浮細胞以及組織等)

(1)對於貼壁細胞:

先將潔凈的蓋玻片在70%乙醇中進行浸泡處理,然後用幹凈無菌的鑷子放置到培養皿中,用無菌 PBS洗去殘留的乙醇。待細胞接近長成單層後取出蓋玻片,操作小心,防止細胞脫片。

(2)對於懸浮細胞:有2種方法,

①先在懸浮液中進行固定步驟,然後把細胞滴加在載玻片上,幹燥後細胞會緊貼在載玻片上。

②先在懸浮液中進行固定和染色步驟,離心洗脫,然後用移液管移至盒式玻片進行後續染色步驟。

(3)對於冷凍切片:切片放置在載玻片上後,可以直接進行固定等後續操作。

(4)對於石蠟切片:免疫熒光中石蠟切片較少,要先進行脫蠟和抗原修復處理。

2、 固定(防止離體組織自溶抗原擴散)

固定液包括:有機溶劑(甲醇、乙醇、丙酮等);交聯劑(4%PFA、10%中性福爾馬林),固定液的選擇取決於被研究抗原的性質及所用抗體的特性,不過,目前甲醛用的還是最多的,但針對磷酸化的抗體,不適合用甲醛,會導致磷酸蛋白從膜表面轉移到胞漿中,故應選擇冰冷的無水甲醇或無水乙醇,同時應註意甲醛會揮發,在4-8°C不宜儲存太久。

固定時間:取決於組合塊的大小和類型,對於大多數組織,18-24h較為理想,細胞固定時間較短,一般2%的甲醛室溫固定20min即可。

以細胞樣品為例:用4%的多聚甲醛固定爬片15min, PBS浸洗玻片3次,每次3min。

3、通透(目的是使抗體進入胞內)

0.5%Triton X-100( 一種去垢劑,用PBS配制 )室溫通透20min(針對胞內抗原,若是細胞膜上表達的抗原則省略該步驟);除瞭Triton X-100,丙酮也可作為通透劑,並且丙酮固定後的樣品不需要通透。

4、封閉(減少一抗和二抗與非特異位點進行結合)

通透後用PBS浸洗玻片3次,每次3 min,吸水紙吸幹PBS,在玻片上滴加山羊血清,室溫封閉30min。常用的封閉液包括:與二抗同一來源的血清、BSA或者是羊血清。從封閉開始所有的步驟,一定要註意樣品的保濕,避免樣品的幹燥,否則極易產生較高的背景。醛類固定的樣品,在用一抗孵育前用含0.3M甘氨酸的封閉液進行封閉。

5、一抗孵育

根據一抗的說明書,按照適當比例用一抗稀釋液稀釋一抗,用吸水紙吸盡封閉液,每張玻片滴加稀釋好的一抗並放入濕盒, 4℃孵育過夜。回收一抗,加入PBST, 在搖床上緩慢搖動洗滌5min,共洗滌3次

6、熒光二抗孵育

用吸水紙吸盡洗滌液後滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中孵育1h後,回收二抗,接著用PBST洗3次,每次5min;由於熒光容易淬滅,故從加熒光二抗起,後面所有操作步驟都要避光。

7、復染核(定位的關鍵)

在玻片上滴加DAPI,並註意避光孵育5min,對標本進行染核,然後用PBST洗3次,每次5min,洗去多餘的DAPI;

8、封片及熒光觀察:用吸水紙吸幹爬片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,然後在熒光顯微鏡下觀察。

二、常見問題

1、弱熒光信號

可能問題 解決方法
錯誤的激發波長 確保激發波長與熒光基團激發光波長相匹配
不兼容的一抗或二抗 註意種屬問題
固定過度或不充分 適當調整時間
樣本保存不當 註意避光
一抗不好用 建議做陽性對照確認抗體的有效性

2、高背景

可能問題 解決方法
洗滌不足 充分洗滌,適當增加洗滌次數
樣本幹燥 在濕盒中孵育抗體,避免樣本幹燥
封閉不充分 延長時間或更換封閉液
抗體濃度過高 預實驗滴定,確認最佳濃度
二抗非特異性結合 不加一抗,隻加二抗,作對照
樣本自發熒光 提前檢測樣本自發熒光情況

3、細胞/組織形態被破壞

可能問題 解決方法
組織切片從玻片上脫落或切片有氣泡 適當增加固定時間
組織切片撕裂或有褶皺 切割刀片不太鋒利,考慮重新切片
細胞或組織固定不充分,自發裂解 適當增加固定時間,使用交聯性固定劑

三、註意事項:對照實驗的設置

1、 內源性組織背景對照:某些細胞和組織可能有固有的生物學性質,會產生背景熒光,對結果產生影響,例如色素脂褐質。因此在孵育一抗前,應對樣品進行觀察,確保抗原本身沒有信號。

2、陽性對照:用確認含有待測抗原的組織或細胞,與待測標本進行統一處理,結果應為陽性,可證明待測抗原有一定活性並且實驗過程中用的試劑及方法均可靠。

3、陰性對照:與陽性對照相反,用明確不含有待測抗原的細胞或組織切片染色,結果若為陰性,可排除染色過程中由於非特異性染色造成的假陽性結果。

IF 常見問題及優化方案

本文轉自小張聊科研及相關網絡內容整理